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實驗室凝膠電泳操作注意事項
更新時間:2023-09-17   點擊次數:1569次
1.選用優質的瓊脂糖:不同品牌的瓊脂糖在質量上有較大的差異。劣質瓊脂糖會導致DNA條帶模糊,甚至條帶缺失。因此請盡量選擇質量穩定可靠的品牌。

2.選擇適當的凝膠濃度:
瓊脂糖凝膠的線性DNA分辨范圍

 3.凝膠制備:配制凝膠和電泳應選用相同的1x緩沖液;使用的容器體積至少是凝膠溶液的3倍,以免溶液沸騰時溢出;制膠過程中盡量趕除氣泡;根據樣品的濃度和體積選擇適當大小的梳子。

4.選擇適當的電泳緩沖液:GenStar® SD緩沖液(Cat. No. E101-50)和TBE緩沖液適用于分離比較小的DNA片段,TAE緩沖液(Cat. No. E102-50)適用于分離比較大的DNA片段;緩沖液應及時更新;膠回收純化應使用新鮮配制的1x電泳緩沖液,以防核酸酶和DNA雜帶污染。

5.核酸樣品的準備:提取的DNA樣品應去除蛋白和多余的鹽分等雜質;PCR樣品應盡量在24小時內電泳檢測,否則條帶容易模糊。

6.上樣緩沖液:所有泳道應使用相同的上樣緩沖液,以防止因離子強度不同造成條帶遷移率偏差。

7.適量上樣:上樣過多會導致上樣孔超載,出現拖帶現象;上樣體積過小可能導致條帶亮度不均。

8.電壓及電泳時間:根據電泳槽型號、凝膠濃度、電泳緩沖液種類和目的條帶大小等選擇適當的電壓和電泳時間。使用GenStar®SD電泳緩沖液時,電壓設置為20~35 v/cm膠長;使用TAE或TBE緩沖液時,最大電壓以不超過20 v/cm膠長為宜。
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